細胞凍存是細胞保存的主要方法之一。現(xiàn)在我們就來講講如何正確的凍存細胞：
一、材料
（一）儀器 1. 凈化工作臺 2. 離心機 3. 恒溫水浴箱 4. 冰箱（4℃、-20℃、-70℃） 5. 倒置相差顯微鏡 6. 培養(yǎng)箱 7. 液氮冰箱
（二）玻璃器皿 1. 吸管（彎頭、直頭） 2. 培養(yǎng)瓶 3. 玻璃瓶（250ml、100ml） 4. 廢液缸
（三）塑料器皿 1. 吸頭 2. 槍頭 3. 膠塞 4. 移液管（10ml） 5. 15ml離心管 6. 凍存管（1～2ml）
（四）其他物品 1. 微量加樣槍 2. 紅血球計數(shù)板 3. 記號筆 4. 醫(yī)用橡皮膏 5. 移液槍
（五）試劑 1. D-Hanks液 2. 小牛血清 3. 培養(yǎng)液 4. 雙抗（青霉素、鏈霉素） 5. 胰蛋白酶（0.08%） 6. 1NHCl 7. 7.4%NaHCO3 8. DMSO（分析純）或無色新鮮甘油
二、操作步驟
（一）細胞凍存
1. 配制含10%DMSO或甘油、10～20%小牛血清的凍存培養(yǎng)液；
2. 取對數(shù)生長期的細胞，用胰蛋白酶把單層生長的細胞消化下來，懸浮生長的細胞則直接將細胞移至15ml離心管中、；
3. 離心1000rpm，5min；
4. 去除胰蛋白酶及舊的培養(yǎng)液，加入適量配制好的凍存培養(yǎng)液，用吸管輕輕吹打使細胞均勻，計數(shù)，調(diào)節(jié)凍存液中細胞的zui終密度為5×106/ml～1×107/ml；
5. 將細胞分裝入凍存管中，每管1～1.5 ml；
6. 在凍存管上標明細胞的名稱，凍存時間及操作者；
7. 凍存：標準的凍存程序為降溫速率-1～-2℃/ min；當溫度達-25℃以下時，可增至-5℃～-10℃/ min；到-100℃時，則可迅速浸入液氮中。也可將裝有細胞的凍存管放入-20℃冰箱2h ，然后放入-70℃冰箱中**，取出凍存管，移入液氮容器內(nèi)。
（二） 細胞復(fù)蘇
1. 從液氮容器中取出凍存管，直接浸入37℃溫水中，并不時搖動令其盡快融化。
2. 從37℃水浴中取出凍存管，打開蓋子，用吸管吸出細胞懸液，加到離心管并滴加10倍以上培養(yǎng)液，混勻；
3. 離心， 1000rpm，5min；
4. 棄去上清液，加入含10%小牛血清培養(yǎng)液重懸細胞，計數(shù)，調(diào)整細胞密度，接種培養(yǎng)瓶，37℃培養(yǎng)箱靜置培養(yǎng)；
5. 次日更換一次培養(yǎng)液，繼續(xù)培養(yǎng)。
三、注意事項
1．從增殖期到形成致密的單層細胞以前的培養(yǎng)細胞都可以用于凍存，但為對數(shù)生長期細胞。在凍存前一天換一次培養(yǎng)液；
2．將凍存管放入液氮容器或從中取出時，要做好防護工作，以免凍傷；
3．凍存和復(fù)蘇用新配制的培養(yǎng)液。
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